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產(chǎn)品介紹 | C-Red 2相機在紅外Ⅱ區(qū)小動物活體成像應(yīng)用

來源:凌云光技術(shù)股份有限公司    2025年09月22日 15:36  

本期為科研黨推薦一款I(lǐng)nGaAs芯片材料的C-Red 2相機,該相機具有高靈敏度、高量子效率、低噪聲等優(yōu)勢,且芯片的制冷溫度可達-40℃,有效降低了暗電流,成為紅外區(qū)熒光成像的理想選擇。

 

紅外Ⅱ區(qū)活體成像

 

體內(nèi)分子成像在臨床前動物模型中是深入理解生理機制的關(guān)鍵技術(shù)。在過去幾十年中,第一個生物窗口(紅外Ⅰ區(qū),700-900nm)的熒光成像已廣泛應(yīng)用于此領(lǐng)域。由于紅外Ⅰ區(qū)較低的吸收和散射特性,其穿透力優(yōu)于可見光(見圖1(A))。然而,對于超過幾毫米深度的信號,圖像的分辨率和靈敏度較差,主要是因為熒光激發(fā)波長(通常為700nm)在該范圍內(nèi)的穿透性較差。


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紅外Ⅱ區(qū)成像的優(yōu)勢[1-3]:

  • 發(fā)射光譜在紅外II區(qū)的熒光染劑可以用具有最佳穿透力的紅外Ⅰ區(qū)的波長激發(fā)(見圖1(B))

  • 散射和吸收在第二個生物窗口相對更弱(見圖1(A))

  • 生物組織自發(fā)熒光較弱,這使得信號相對于背景信號的信噪比大幅提升

 


因此,紅外Ⅱ區(qū)成像(1000-1700nm)相較于可見光或紅外Ⅰ區(qū)熒光,具有更出色的空間分辨率、穿透深度和對比度。隨著這些優(yōu)勢的逐步顯現(xiàn),紅外Ⅱ區(qū)成像正成為臨床前[1,4]和臨床[5]研究中的關(guān)鍵技術(shù)之一。


 

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圖1-(A)生物組織中的光學(xué)窗口。在第一和第二紅外窗口中,血液和組織的吸收和散射被最小化,從而使光更容易穿透。(B)在第一和第二窗口中成像的穿透光譜


研究表明,紅外Ⅰ區(qū)成像中使用的部分造影劑在紅外Ⅱ區(qū)的光譜范圍內(nèi)也具有可用的發(fā)射光譜尾端(見圖2(B))。吲哚菁綠(ICG)是一種生物兼容且經(jīng)過FDA批準的造影劑,廣泛應(yīng)用于紅外Ⅰ區(qū)和紅外Ⅱ區(qū)的熒光成像中[6,7]。


然而,傳統(tǒng)的硅基相機在可見光和紅外Ⅰ區(qū)成像時表現(xiàn)良好,但在紅外Ⅱ區(qū)的光譜范圍內(nèi)并不敏感(見圖2(A))。因此,進行紅外Ⅱ區(qū)成像通常需要采用基于InGaAs傳感器的相機,這類相機在短波紅外區(qū)域(900-1700nm)具有較高的靈敏度。C-Red 2便是由First Light Imaging開發(fā)的一款640x512像素的InGaAs陣列相機,它將紅外Ⅱ區(qū)的高靈敏度與高幀率相結(jié)合,能夠?qū)崿F(xiàn)高靈敏度的動態(tài)成像。


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圖2-(A)基于硅(Si)和銦鎵砷(InGaAs)傳感器的典型相機的靈敏度曲線。基于InGaAs的傳感器最適合在第二生物窗口中成像。(B) 吲哚菁綠的熒光激發(fā)發(fā)射譜


利用C-Red2進行紅外Ⅱ區(qū)成像

 

紅外臨床前成像儀

小動物成像實驗裝置,主要元件是用于樣本(小鼠)的載物臺、用于熒光激發(fā)的激光源和成像設(shè)備,成像設(shè)備包括物鏡、一組發(fā)射濾光片和用于檢測熒光的相機。對于下文所述的結(jié)果,C-Red 2相機安裝在現(xiàn)有的短波紅外成像裝置中。808nm激光器,提供120mW/cm2的照明,高通短波紅外濾光片。臨床前成像設(shè)備由OPTIMAL Grenoble建立。


 

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圖3-實驗中使用的成像系統(tǒng)

 


動物模型和方法

 

將一只六周大的雌性裸鼠(Janvier Labs)麻醉,并在尾部靜脈注射500µmol/L的ICG。注射后t0至t+40s拍攝視頻。然后,采集了耳朵注射后15分鐘的放大圖像以及ICG在耳朵中的生物分布的延時圖。

 


實驗結(jié)果

 

靜脈注射ICG后,對小鼠全身進行體內(nèi)紅外II區(qū)成像提供了ICG在所有器官中的生物分布圖。后肢脈管系統(tǒng)、器官、血管系統(tǒng)和股血管清晰可見。請注意,圖像的低自發(fā)熒光和高對比度。下圖突出顯示了一些關(guān)鍵器官。采集參數(shù)為:10ms積分時間、100FPS、高增益、CDS模式。為提高對比度,進行灰值反轉(zhuǎn),未做其他圖像處理。


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圖4-紅區(qū)小鼠全身的熒光體內(nèi)成像。血管網(wǎng)絡(luò)以高對比度看到。灰值反轉(zhuǎn)和自動縮放對比度


下圖集中拍攝小鼠腹部,突出了系統(tǒng)在對比度和分辨率方面的性能。輪廓上圖片的窄度說明了血管的高空間分辨率,而圖片的信噪比說明了信號與背景的比率。


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圖5小鼠全身的紅外Ⅱ區(qū)熒光圖像(左)和沿紫色虛線的橫截面熒光強度分布(右)


使用更高放大倍數(shù)的鏡頭可以獲取特定感興趣區(qū)域的更詳細視圖。以下展示的是耳朵脈管系統(tǒng)的示例。采集參數(shù)包括:500ms的積分時間、2FPS的幀率、高增益以及CDS模式。為了提高對比度,進行了灰值反轉(zhuǎn),未進行其他圖像處理。值得注意的是,高信噪比和信號背景比可以使皮膚和皮下血管顯現(xiàn)出來。


例如,在制藥應(yīng)用中,這種技術(shù)可以實現(xiàn)非侵入性的研究由敏感材料誘導(dǎo)的血管反應(yīng),提供更加精準和清晰成像結(jié)果。


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圖6-紅外區(qū)外耳脈管系統(tǒng)的熒光體內(nèi)成像


C-Red 2相機的增益和偏差實時校正功能,使高質(zhì)量圖像能夠?qū)崟r可視化??梢跃_地研究熒光標記的生物分布。


為什么選擇C-Red 2

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易于集成。相機底部、側(cè)面或正面有安裝螺孔,相機可以很容易地集成到系統(tǒng)中,標配C口適配器,可接各種標準C口鏡頭。First Light Vision GUI使C-Red 2成為一款即插即用型相機,多功能SDK,可以與MatLab、LabView等接口連接。

 

特殊視頻模式。大容量的圖像緩沖區(qū)支持長時間的視頻錄制,其特殊功能“直接錄制”允許動態(tài)保存圖像并獲取無限長的視頻。


高靈敏度。由于其低讀出噪聲<30e-和優(yōu)化的暗電流600e-/pix/s(-40°C),C-Red 2非常靈敏,能夠檢測到非常微弱的信號。


針對長曝光時間優(yōu)化設(shè)計。熱電冷卻與空氣(風扇)和水冷卻相結(jié)合,相機可冷卻至-40°C。此外,對于長曝光時間,可以優(yōu)化采集設(shè)置。


即時修正。實時執(zhí)行偏差和增益校正。


簡化實驗。支持最多保存十個預(yù)設(shè)配置,以便配置之間快速切換。

 



實時可視化體內(nèi)微血管系統(tǒng)顯著提高了我們對循環(huán)系統(tǒng)(如血管結(jié)構(gòu)、血流等)及相關(guān)病理的理解。同時,利用這種技術(shù),還能非侵入性地高精度監(jiān)測心率、呼吸率等生理參數(shù)。這些功能是生物醫(yī)學(xué)紅外Ⅱ區(qū)成像的多種應(yīng)用之一,其他應(yīng)用還包括腫瘤可視化和藥物研發(fā)等領(lǐng)域。


C-Red 2相機在小動物成像領(lǐng)域表現(xiàn)出色,尤其在高對比度成像方面。能精準捕捉小鼠血管系統(tǒng)的細節(jié),并通過高時間分辨率的視頻繪制生物動力學(xué)圖。同時相機具備長曝光、高達600FPS的高幀率和短積分時間,始終輸出高質(zhì)量圖像,是小動物成像的理想選擇。


參考文獻

1.  Zhu, S.; Yung, B. C.; Chandra, S.; Niu, G.; Antaris, A. L.; Chen, X. Near-Infrared-II (NIR-II) Bioimaging via Off-Peak NIR-I Fluorescence Emission. Theranostics 2018, 8 (15), 4141–4151.

2.  Bhavane, R.; Starosolski, Z.; Stupin, I.; Ghaghada, K. B.; Annapragada, A. NIR-II Fluorescence Imaging Using Indocyanine Green Nanoparticles. Sci. Rep. 2018, 8 (1), 14455.

3.  Smith, A. M.; Mancini, M. C.; Nie, S. Second Window for in Vivo Imaging. Nat. Nanotechnol. 2009, 4 (11), 710–711.

4.  Byrd, B. K.; Marois, M.; Tichauer, K. M.; Wirth, D. J.; Hong, J.; Leonor, J. P.; Elliott, J. T.; Paulsen, K. D.; Davis, S. C.First Experience Imaging Short-Wave Infrared Fluorescence in a Large Animal: Indocyanine Green Angiography of a Pig Brain. J. Biomed. Opt. 2019, 24 (08), 1.

5.  Hu, Z.; Fang, C.; Li, B.; Zhang, Z.; Cao, C.; Cai, M.; Su, S.; Sun, X.; Shi, X.; Li, C.; Zhou, T.; Zhang, Y.; Chi, C.; He, P.; Xia, X.; Chen, Y.; Gambhir, S. S.; Cheng, Z.; Tian, J. First-in-Human Liver-Tumour Surgery Guided by Multispectral Fluorescence Imaging in the Visible and near-Infrared-I/II Windows. Nat. Biomed. Eng. 2020, 4 (3), 259–271.

6.  Starosolski, Z.; Bhavane, R.; Ghaghada, K. B.; Vasudevan, S. A.; Kaay, A.; Annapragada, A. Indocyanine Green Fluorescence in Second Near Infrared (NIR-II)Window.PLOSONE2017,12(11),e0187563.

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